Formulación probiótica derivada de cepas nativas de perro usada como complemento en el tratamiento de enfermedades gastrointestinales de mascotas.

Abstract

En este estudio se caracterizaron cepas potencialmente probióticas aisladas de la leche materna para su uso en enteropatías caninas. Se utilizaron dos cepas de leche materna canina y una cepa de leche materna porcina previamente caracterizadas según sus propiedades funcionales, propiedades presuntivas de seguridad y efecto inhibitorio sobre patógenos. Estas bacterias se formularon mediante liofilización y secado por atomización, comparando rendimiento y almacenamiento en tiempo normal y acelerado. Se analizaron el efecto citotóxico, adhesión al intestino y el efecto inmunomodulador de las formulaciones con mejor caracterización probiótica in vitro e in vivo. Se determinó que, en base al rendimiento de encapsulación y la viabilidad de las formulaciones, el recubrimiento óptimo para las cepas TUCO-17 y TUCO-4 fue FOS e inulina; y para la cepa TUCO-16 fue maltodextrina e inulina. Todas las cepas resultaron no citotóxicas en cultivos de células de perro MDCK y TUCO-17 mostró mayor adhesión a las células epiteliales intestinales. Resultó relevante que la administración de la formulación probiótica disminuyó la expresión de marcadores proinflamatorios in vivo, tanto en el intestino como en el bazo de ratones. Además, su administración en perros con alteraciones entéricas indujo una reducción de la duración de la diarrea, mejoró la consistencia de las heces y los parámetros clínicos. Finalmente, la combinación de estas tres cepas en estudio (TUCO-16, TUCO-17 y TUCO-4) cubriría las propiedades probióticas en formulación e inmunomodulación de todos los marcadores en estudio.

In this study, potentially probiotic strains isolated from breast milk were characterized for use in canine enteropathies. Two strains from canine breast milk and one strain from swine breast milk previously characterized according to their functional properties, presumptive safety properties, and inhibitory effect on pathogens were used. These bacteria were formulated by freeze drying and spray-drying, comparing performance and storage in normal and accelerated time. The non-cytotoxic characteristics, adhesion to the intestine, and the immunomodulatory effect of the formulations with better probiotic characterization in vitro and in vivo were analyzed. Based on the encapsulation performance and the viability of the formulations, it was determined that the optimal coating for the TUCO-17 and TUCO-4 strains was FOS and Inulin. For the TUCO-16 strain, it was Maltodextrin and Inulin. All strains were non cytotoxic in dog MDCK cell cultures, and TUCO-17 showed increased adhesion to intestinal epithelial cells. It was relevant that the administration of the probiotic formulation decreased the expression of proinflammatory markers in vivo, both in the intestine and in the spleen of mice. In addition, its administration in dogs with enteric disorders reduced the duration of diarrhea and improved stool consistency and clinical parameters. Finally, combining these three strains under study (TUCO-16, TUCO-17, and TUCO-4) would cover the probiotic properties in the formulation and immunomodulation of all the markers under study.